科学背景与研究现状
BRAF(v-raf murine sarcoma viral oncogene homolog B)基因位于人类7号染色体(7q34),编码一种丝氨酸/苏氨酸激酶,是丝裂原活化蛋白激酶(Mitogen-Apartate Protein Kinase, MAPK)信号通路的关键成员。该通路通过RAS-RAF-MEK-ERK级联反应调控细胞增殖、分化与凋亡。BRAF V600E突变(第600位缬氨酸被谷氨酸取代)导致激酶结构域持续激活,引发MAPK通路的异常活化,进而驱动肿瘤发生12。
·流行病学与预后:BRAF V600E突变在结直肠癌中占比约8-10%,多见于右半结肠、女性患者,且与微卫星不稳定性(Microsatellite Instability, MSI)和染色体不稳定性(Chromosomal Instability, CIN)相关16。该突变患者中位总生存期(Overall Survival, OS)显著短于野生型(约11个月 vs. 30个月),是独立的不良预后因素58。
·治疗困境:传统化疗(如FOLFOX/FOLFIRI)对BRAF V600E CRC患者疗效有限,客观缓解率(Objective Response Rate, ORR)不足10%34。靶向BRAF的单药抑制剂(如维莫非尼、恩考芬尼)因表皮生长因子受体(Epidermal Growth Factor Receptor, EGFR)反馈激活导致耐药,单药缓解率仅4.8%57。
·联合靶向策略:基于BEACON CRC研究,BRAF抑制剂(如恩考芬尼)联合MEK抑制剂(如比美替尼)及抗EGFR单抗(如西妥昔单抗)的“三靶方案”将中位OS提升至9.3个月,但疗效仍远低于黑色素瘤等癌种47。
·耐药机制:肿瘤微环境(Tumor Microenvironment, TME)的免疫抑制特性、MAPK通路旁路激活(如PI3K/AKT通路)及KRAS/PIK3CA共突变是主要耐药原因48。
尽管BRAF V600E CRC中MSI-H(微卫星高度不稳定)亚型可能从免疫检查点抑制剂(如PD-1/PD-L1抑制剂)中获益,但仅占突变患者的5-10%。多数患者为微卫星稳定(Microsatellite Stable, MSS)型,且PD-L1表达水平低,免疫治疗响应率不足15%39。
·细胞外囊泡(Extracellular Vesicles, EVs)递送技术:通过工程化EVs递送BRAF V600E特异性siRNA,可精准抑制突变蛋白表达,在临床前模型中显示显著抗肿瘤活性(ORR达81%)5。
·化疗联合靶向的优化:IMPROVEMENT研究显示,FOLFIRI联合BRAF/EGFR双靶方案(维莫非尼+西妥昔单抗)可将中位无进展生存期(Progression-Free Survival, PFS)延长至9.7个月,但需平衡毒性89。
尽管联合治疗策略取得一定突破,以下问题仍待解决:
1.耐药机制的复杂性:MAPK通路反馈激活与肿瘤异质性导致靶向治疗响应短暂,需探索更全面的信号网络调控策略。
2.精准递送系统的缺乏:现有药物难以穿透肿瘤基质屏障,EVs等新型递送技术虽具潜力,但其规模化生产与体内安全性仍需验证5。
3.免疫微环境的调控:MSS型BRAF V600E CRC的免疫“冷肿瘤”特性限制了免疫治疗应用,如何通过靶向-免疫联合重塑TME成为关键。
实验技术方法
本研究核心围绕患者来源的结直肠癌类器官(PDOs)构建与分析,结合多维度技术手段揭示BRAF V600E突变对放射治疗(RT)和化疗的响应机制。关键实验技术如下:
分离与培养流程:
(1)组织样本来源:
·手术切除或活检获取的结直肠癌(CRC)组织样本,经伦理审查后分离培养。
·冷冻保存的肝转移(LM)组织用于模型验证。
(2)培养基与关键试剂:
·培养基:专用人CRC类器官培养基(配方未公开,需依赖补充材料),含生长因子(如EGF、Wnt3a)、小分子抑制剂(如Rho激酶抑制剂Y-27632),支持干性和增殖。
·基质胶(Matrigel):模拟体内三维(3D)微环境,用于包裹类器官形成球状结构。
(3)传代与冻存:
·解离方法:机械吹打(50~100次)+抗粘附溶液(D1Med, D23025-0050)处理。
·分装比例:1:3分装至新基质胶,37℃孵育形成新类器官。
·冻存条件:使用无血清冻存液(CELLBANKER™ 2),每样本冻存≥5管,传代数≤10次以保证遗传稳定性。
科普知识:
类器官培养利用组织干细胞自我组装能力,在基质胶提供的物理支撑和生长信号下,模拟真实肿瘤的异质性与微环境。Matrigel富含层粘连蛋白、胶原等胞外基质组分,是维持3D结构的关键。
(1)放射治疗(RT)实验
· 辐射设备:X射线放射仪(Raycision, Sharp 100),剂量梯度设计为0、4、8、12、16 Gy。
· 生存率计算:
o 手动计数法:辐射后第6天统计存活类器官数,计算生存分数(SF)=(实验组存活数/初始数)÷(对照组存活数/初始数)。
o D0值模型:基于SHMT模型拟合剂量-存活曲线,量化放射抗性(D0为存活率降至37%的剂量)。
(2)化疗与联合治疗
· 药物处理:
o 化疗药物:5-FU(10 μM)、伊立替康(10 μM)、奥沙利铂(10 μM)单用或联用。
o 时序设计:放疗(8 Gy)同步或序贯联合化疗(药物处理6天)。
· 检测指标:
o 形态学评估:显微镜成像(Olympus iX73)结合Image-Pro Plus 6.0测量类器官面积变化。
o 细胞活性:CellTiter-Glo® 3D(ATP法)定量活细胞比例。
(3)凋亡与DNA损伤检测
· 流式细胞术:PE Annexin V/7-AAD双染法(BD Pharmingen试剂)量化凋亡率。
· 免疫荧光:γH2AX抗体检测DNA双链断裂(DSB)焦点,共聚焦显微镜(Leica STELLARIS 5)成像并最大投影分析。
(1)全外显子测序(WES)
· DNA提取:类器官与配对外周血DNA(SDS法)比对体细胞突变。
· 数据分析:筛选驱动突变(如BRAF V600E),验证与放射敏感性相关性。
(2)Sanger测序验证BRAF突变
· 引物设计:特异性扩增BRAF外显子15(引物序列全文提供)。
· PCR条件:94℃预变性5分钟,35循环(94℃ 30s→60℃ 30s→72℃ 30s)。
· 构建流程:
o 移植:BRAF突变类器官皮下植入NSG小鼠,肿瘤长至500 mm³后二次移植至BALB/c裸鼠。
o 治疗分组:对照组、放疗(2 Gy)、化疗(5-FU 30 mg/kg)、联合治疗。
· 疗效评估:肿瘤体积监测+终点解剖分析(H&E染色、免疫组化验证标志物)。
· 疗效评估标准:
o 病理缓解(pTRG):AJCC第7版指南分级。
o 影像学评估:RECIST 1.1标准(完全缓解CR→疾病进展PD)。
· 生存分析:Kaplan-Meier曲线(R语言分析无复发生存期)。
· PDOs模型的高保真性:保留原发瘤遗传特征与药物响应,替代传统2D细胞系。
· 动态多功能评估平台:整合放疗、化疗、分子检测,实现“类器官芯片”功能。
· 转化医学衔接:PDOX模型串联体外与临床数据,验证治疗策略可行性。
复杂技术科普:
· 类器官vs.传统模型:相较于细胞系,PDOs保持肿瘤异质性;相较于PDX模型,成本低、周期短,适用于高通量筛选。
· 放射敏感性指标D0:反映细胞修复DNA损伤的能力,D0值越高提示放射抗性越强。
该研究通过系统化技术整合,为BRAF突变CRC的精准治疗提供了可靠实验体系。
特色与创新之处
该研究的特色与创新之处主要体现在以下几个方面,均基于科学数据与严谨方法学支撑:
通过建立包含116例CRC患者类器官的生物样本库,研究首次系统性整合全外显子测序(WES)与放射敏感性功能分析,构建了BRAF V600E突变亚群(n=9)与野生型对照(n=10)的体外模型体系。相比传统二维细胞模型,PDOs保留了原发肿瘤的三维结构与遗传异质性,为揭示放疗抵抗的分子机制提供了更贴近临床的真实模型基础。
研究首次通过多维度功能评估(存活率、DNA损伤修复、凋亡动态)证实:BRAF V600E突变类器官对单一放疗(D0值升高,γH2AX清除延迟)及化疗(5-FU、奥沙利铂、伊立替康)普遍敏感性低,但对放化疗联合治疗(尤其是5-FU + 8 Gy)表现显著协同效应(凋亡率↑27%,p<0.001)。此发现挑战了既往认为BRAF突变患者“治疗无响应”的认知,提出“联合策略增效”新方向。
研究创新性地将PDOs实验结果、PDOX小鼠模型(放化疗响应动态监测)与临床患者队列(LARC患者pTRG评分及RECIST标准疗效)数据进行纵向整合。结果显示,BRAF突变患者临床放化疗缓解率与PDOs敏感性呈强相关性(R²=0.82),验证了PDOs作为预测标志物平台的转化潜力。
通过激酶活性检测与下游信号通路分析(如MAPK/ERK激活状态),发现BRAF V600E突变通过促进DNA损伤修复(Rad51↑/Ku80↑)及抗凋亡蛋白(Bcl-2↑)表达,介导放疗抵抗。此机制阐释为未来靶向联合治疗(如BRAF抑制剂+放疗)提供理论依据。
基于研究数据构建的“BRAF突变分型-放化疗响应预测模型”(AUC=0.92),为BRAF V600E突变型CRC患者推荐阶梯式治疗方案:优先选择含放疗的联合策略(而非单一化疗),并为耐药患者筛选潜在增敏靶点(如BRAFi+SHP2抑制剂)。
综上,该研究通过创新性模型体系与跨尺度验证,不仅填补了BRAF突变CRC放射生物学特性的知识空白,更为精准治疗策略优化提供了实操性强的理论支持与转化路径。
文章来源:
Peiyuan Mu, Shaobo Mo, Xingfeng He,et al.Unveiling radiobiological traits and therapeutic responses of BRAFV600E-mutant colorectal cancer via patient-derived organoids.J Exp Clin Cancer Res.2025 Mar 11;44(1):92.doi: 10.1186/s13046-025-03349-z.
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